Microscope confocal à balayage laser

Microscope confocal à balayage laser

Consulter l'ensemble des résultats microscope confocal :

  • A1R de chez Nikon, localisé sur la plateforme BIBS de BIA (Nantes)
  • Microscope inversé 
  • Objectifs x4, x10, x20, x40, x60, x100
  • Détecteurs GaAsP
  • Équipé d'une sonde 375 nm
  • contact : Bruno Novales
  • C2 chez Nikon, localisé sur la cellule APEX (Nantes)
  • Microscope inversé
  • Objectif 20X, 
  • Source  laser
  • Détecteur GaAsp
  • contact : Laurence Dubreil
  • LSM700 de chez Zeiss Microscopy, localisé sur la plateforme MIMA2 (Jouy-en-Josas)
  • Microscope inversé 
  • Objectifs X5/0,30 dry, X10/0,3 dry, X16/0,5 oil,  X40/1,3 oil, x63/1,4 oil
  • Sources diodes 405, 488, 555 et 639 nm et lampe d'excitation mercure HBO 50W
  • Filtres  DAPI, FITC, Rhodamine, et Cyanine 5
  • Détecteurs  deux canaux (photomultiplicateurs, PMTs) et une diode pour la détection de l'image en transmission (image non confocale).
  • Caméra Axiocam HRm
  • contact : Pierre Adenot
  • LSM700 de chez Zeiss Microscopy, localisé au plateau technique du PHIM (Montpellier)
  • Microscope droit
  • Objectifs 10X, 20X, 40X immersion à eau, 63X immersion à huile
  • Source  lampe à vapeur de mercure
  • Filtres  pour fluorochromes bleu (DAPI...)/ verts (A488...)/ rouges (A568…)
  • Détecteur  2 PMTs
  • contact : Marie-Stéphanie Vernerey

 

  • LSM710 de chez Zeiss Microscopy, localisé à l'Observatoire du Végétal OV-Cytologie/Imagerie (Versailles-Grignon)
  • Microscope inversé, monté sur un Axio Observer Z1
  • Objectifs  EC Plan-Neofluoar 10x, 0.N=0,3, W.D=5,2,   LD LCI Plan-Apochromat 25x, O.N=0,8, W.D=0,57,   Plan Apochromat 40x, O.N=1,3, W.D=0,21       Plan Apochromat 63x, O.N=1,4, W.D=0,19,         C- Apochromat 63x, O.N=1,3, WD=0,28
  • Sources  HXP 120, laser argon: 458 nm, 488 nm et 514 nm, laser HeNe 633 nm
  • Filtres  49 DAPI (G 365 FT 395  BP  445/50), 38 GFP (Ex 470/40 FT 495 BP 525/50), 43 DSRed (Ex 545/25 FT 570 BP 605/70), 47 Cyan (Ex 436/20 FT 455 BP 480/40)  
  • Détecteurs  3 Photomultiplicateurs dont barrette 32 détecteurs spectral, 1 PMT transmission, 2 Gasp port externe
  • Équipé du module BiG port externe pour anisotropie de fluorescence et des modules permettant les "F-tecnhiques" et "Online Fingerprinting"
  • contact : Gladys Cloarec
  • LSM780 chez Zeiss Microscopy, localisé sur la cellule APEX (Nantes)
  • Microscope inversé
  • Objectif 5X, 10X, 20X, 40X, 63X
  • Source  laser
  • Détecteur GaAsp
  • Module AIRYSCAN, possibilité de faire du TIRF
  • contact : Laurence Dubreil
  • LSM900 de chez Zeiss Microscopy, localisé sur le Plateau d'Imagerie Cellulaire PIC (Tours)
  • Microscope inversé 
  • Objectifs 5X/0.16 air, 10X/0.3 air, 20X/0.8 air, 40X/1.0 eau, 40X/1.3 huile, 40X/1.4 huile, 63X/1.4 huile
  • Sources Diodes 405, 488, 561, 640
  • Filtres  DAPI, GFP, DsRed, Cy5
  • Détecteurs  3 détecteurs GaAsP dont 1 détecteur AiryScan 2 multiplex 2Y-4Y + 1 détecteur lumière transmise (ESID)
  • Camera  Axiocam 305 monochrome
  • AiryScan 2 multiplex 4Y, enceinte opaque thermostatée avec contrôle du CO2, station déportée direct processing avec LSM+ et Joint Deconvolution
  • Logiciel d'acquisition  ZEN Blue 3.5
  • contact :  Marie-Claire Blache
  • LMS780 de chez Zeiss Microscopy, localisé sur le Plateau d'Imagerie Cellulaire PIC (Tours)
  • Microscope inversé 
  • Objectifs 10X/0.3 air, 20X/0.5 air, 20X/0.8 air, 40X/1.3 huile, 40X/1.2 eau, 63x/1.4
  • Sources Lasers argon 458, 488 et 514 nm, HeNe 633 nm et diode 405 et 561 nm
  • Filtres  DAPI, GFP, DsRed
  • Détecteurs  1 détecteur spectral à 32 canaux, 2PMT, 1 PMT lumière transmise, 2 détecteurs GaAsP (module BIG)
  • Équipé d'un cube séparateur d'ondes polarisées (pour l'anisotropie de fluorescence), enceinte thermostatée avec contrôle du CO2.
  • Logiciel d'acquisition  ZEN Black 2011
  • contact :  Marie-Claire Blache
  • Spinning disk : tête Yokogawa CSU-X1 monté sur un Axio Observer Z1 de chez Zeiss Microscopy, localisé à l'Observatoire du Végétal OV-Cytologie/Imagerie (Versailles-Grignon)
  • Microscope inversé
  • Objectifs LD LCI Plan-Apochromat 25x, O.N=0,8, W.D=0,6,   Plan Apochromat 40x, O.N=1,3, W.D=2,1, Plan Apochromat 100x, O.N=1,4, W.D=1,7, Plan Apochromat 100x, O.N=1,46, W.D=0,1, W Plan Apochromat 63x, O.N=1,0, W.D=2,1
  • Sources  HXP 120, diodes 405, 488 et 561 nm
  • Filtres  38 HE GFP (BP 450- 490 BS 495 BP 500 550), 63HE DSRed (BP 559-585 BS 590 BP 600-690), 76HE CFP (BP 390-422 BS 427 BP BP 448-472 ), GFP (BP 484-501 BS 503 BP 512-538), DSRED (BP 549-573 BS 578 BP 585-631)
  • Cameras  Prime 95B (spinning disk), Flash 4,0 LT (TIRF)
  • Équipé d'une chambre thermostatée, des modules FRAP et TIRF et du Definite focus.
  • Logiciel Zen 2.6
  • contact : Gladys Cloarec
  • SPE de chez Leica, localisé sur le plateau technique de cytologie-microscopie de BIOGER (Thivernal-Grignon)
  • Microscope inversé 
  • Objectifs X10/0,30 dry, X40/1,15 oil, X63/1,30 oil,  X63/1,15 water
  • Sources  diode 405 nm, laser 488, 532 et 635 nm, illuminateur EL6000
  • Filtres DAPI (Leica-A), FITC (Leica I3), PI (Leica N2.1), RFP
  • Détecteur  PMT
  • contact : Kaori Sakai
  • SP5 AOBS Tandem Hybride de chez Leica, localisé à l'Observatoire du Végétal OV-Cytologie/Imagerie (Versailles-Grignon)
  • Microscope inversé
  • Objectifs HCX PL APO CS 10x, O.N=0,4, W.D=2,2, HC PL APO CS 20X, O.N=0,7, W.D=0,26,    HC PL APO 40X, O.N=1,3, W.D=0,24,     HCX PL APO CS 63x, O.N=1,4 -0,6, WD=0,10,    HCX APO L U-V-I 40x, O.N=0,8, WD=3,3,       HCX PL APO CS 63x, O.N=1,2, W.D=0,22
  • Sources  HXP 120, laser ROYB dans le visible 458, 476, 488, 496 et 514 nm, diode UV 405 nm, DPSS 561 nm et HeNe 633 nm
  • Filtres  UV - DAPI (Ex 360/40 DM 400 BP 470/40), I3 - FITC (Ex 450-490 DM 510 LP 515), N2.1-FM4-64 (Ex 515-560 DM 580 LP 590), GFP-A488 (Ex 470/40 DM 500 BP 525/50), N3-DSRed (Ex 540-552 DM 565 BP 580/620)
  • Détecteurs  2 Hybrides, 3 Photomultiplicateurs, 1 PMT transmission
  • Équipé d'un scanner résonnant 8 kHz
  • contact : Gladys Cloarec
  • SP8 AOBS Tandem Hybride de chez Leica, localisé à l'Observatoire du Végétal OV-Cytologie/Imagerie (Versailles-Grignon)
  • Microscope droit
  • Objectifs HC PL APO CS 10x, O.N=0,4, W.D=2,2, HC PL APO CS 20X, O.N=0,75, W.D=0,66,    HC PL APO 40X, O.N=1,3,     HC PL APO CS 63x, O.N=1,4, WD=0,14,    HCX PL APO 100x, O.N=1,4, W.D=0,09,      HC Fluotar L 25x, O.N=0,95, W.D=2,5,     HC PL APO CS2 63x, O.N=1,2, W.D=0,3
  • Sources  HBO, laser ROYB dans le visible 458, 476, 488, 496 et 514 nm, diode UV 405 nm, diode 442 nm, DPSS 561 nm et HeNe 594 et 633 nm
  • Filtres UV - DAPI (Ex 360/40 DM 400 BP 470/40), I3 - FITC (Ex 450-490 DM 510 LP 515), N2.1-FM4-64 (Ex 515-560 DM 580 LP 590), GFP-A488 (Ex 470/40 DM 500 BP 525/50), N3-DSRed (Ex 540-552 DM 565 BP 580/620)
  • Détecteurs 2 Hybrides, 3 Photomultiplicateurs, 1 PMT transmission
  • Équipé d'un scanner résonnant 12 kHz
  • Logiciel LAS X : Lightining, Navigateur, Déconvolution intégrée (LASX 2D/3D déconvolution)
  • contact : Gladys Cloarec
  • SP8 de chez Leica, localisé au Pôle de microscopie µ3A (Avignon)
  • Microscope inversé
  • Objectifs  x10 a sec, x20 a sec, x40 immersion eau, x40 immersion huile, x63 immersion huile
  • Sources  diodes laser 405, 448, 488, 552 et 638 nm 
  • Filtres DAPI, GFP, RHOD
  • Détecteurs 2 PMT classiques + 2 hybrides
  • Équipé d'une chambre thermostatée et d'un scanner résonnant
  • Contact : Isabelle Bornard 
  • SP8 de chez Leica, localisé sur la plateforme MIMA2 (Jouy-en-Josas)
  • Microscope inversé 
  • Objectifs 10x, 40x, 40x eau, 63x eau, 63x huile
  • Sources laser 458, 476, 488, 496, 514, 561 et 633 nm
  • Filtres  DAPI, FITC, Rhodamine, et Cyanine 5
  • Détecteurs 2 PMT et 2 HyD (ultra-sensibles) pour la fluo, 1 PMT pour la transmission
  • Caméra Axiocam HRm
  • Équipé d'une platine motorisée et chambre thermostatée (jusqu’à 50 °C) et régulée CO2, d'un sytème AOBS (dichroïque polyvalent), d'un scanner résonnant 8 kHz) et d'u lampe métal halide pour l'observation de la fluo aux oculaires
  • contact : Julien Deschamps
  • SP8 de chez Leica, localisé sur la plateforme PHIV-MRI de la Gaillarde (Montpellier)
  • Microscope inversé
  • Objectifs  10X HC Plan Fluotar 0.3 NA, 20X HC Plan Apochromat 0.7 NA CS, 40X HCX corr Plan Apochromat CS 1.1 NA water, 40X HCX Plan Apochromat CS 1.3 NA oil, 63X HCX Plan Apochromat CS 1.4 NA oil
  • Source Lampe HXP120
  • Filtres DAPI/ FITC / GFP / DsRed 
  • Détecteurs 2 détecteurs hybrides + 1 PMT
  • contact : Carine Alcon
  • TCS SP8 de chez LEICA, localisé à l'atelier Infectiologie et imagerie de l'ISP (Nouzilly), dans un laboratoire L2
  • Microscope inversé 
  • Objectifs HC PL APO 20x/0.75 IMM CORR CS2, HC FLUOTAR L 25x/0.95W VISIR, coverglass, HC PL APO 40x/1.30 Oil CS, HCX PL APO 100x/1.44 Oil CS2, HC PL APO 63x/1.20 W CORR CS2
  • Sources diode Laser 405 nm - 50 mW, laser argon 458, 476, 488, 496 et 514 nm - 65 mW,  diode laser 561 nm - 20 mW, laser HeNe 633 nm - 10 mW
  • Filtres  système AOBS
  • Détecteurs  2 PMT +1 PMT trans + 1 Hydride
  • Caméras pour DLS : sCMOS camera (Leica DF9000)
  • Équipé d'une chambre thermostatée avec distribution et contrôle du CO2 et du système Digital Light Sheet 
  • contact : Christelle Rossignol
  • Ti-E- A1 de chez Nikon, localisé sur le plateau technique IMAC de la SFR QUASAV (Angers)
  • Microscope inversé équipé d'une platine encodée et motorisée XY (multipoint, time lapse), d'un joystick et d'une télécommande (laser)
  • Oculaires  CFl 10X/22
  • Objectifs  tourelle motorisée avec 6 objectifs :CFI PLAN FLUOR 10X / 0;30 DIC L / N1 WD 16 (Nikon, MRH00101), CFI PLAN APO l 20X / 0.75 ∞ / 0.17 WD 1.0 OFN25 DIC N2 (Nikon, MRD00205), CFI PLAN FLUOR 20XC Mlmm (multi-immersion) / 0.75 OFN25 DIC N2 ∞ / - WD 0.35 (Nikon MRH07241), CFI APO 40X / 1.25 WI l S ∞ / 0.15 - 0.19 WD 0.20-0.16 (eau) (Nikon, MRD77400), CFI PLAN FLUOR 40X /1.30 (Oil), OFN25 DIC N2 ∞ / 0.17 WD 0.24 (Nikon MRH01401), CFI PLAN APO VC l 60X / 1.40 Oil OFN25 DIC N2 ∞ / 0.17 WD 0.13 (Nikon MRD01602)
  • Sources  Source épi- fluorescence INTENSILIGHT C-HGFi manuelle (UltraHight pressure 130W mercury lamp, 2000H, 380-600nm), unité laser LU4 4-Laser Unit (Melles Griot Violet DIODE laser 405 nm, 36 mW / Melles Griot Argon Ion Laser 457/488/514 nm, 40 mW/ Sapphire 561/50 CW, 10 mW Laser Coherent/ Diode Laser System 642 nm, 10 mW)
  • Eclairage diascopique pour lumière transmise de type lampe halogène 12V, 100W)
  • Filtres  3 cubes dichroïques à épifluorescence (6 positions) : TE/DAPI Bright (ex 377/50 DM 409), TE/GFP (ex 472/30, DM 495, Em 520/35), TE/TRITC (ex 543/22, DM 562, Em 593/40) et cube épifluo vide Noise Terminator
  • Filtre d’émission 450/50, 525/50, 595/50, 700/75
  • Détecteurs  fluorescence standard : 4 PMT (400-750 nm) A1-DU4 4 detector unit
  • Détecteur spectral : 32 PMT channels, 400-750 nm, résolution 2.5 nm, 6 nm, 10 nm, unmixing A1-DUS Spectral detector unit
  • Détecteur diascopic : PMT (485-650 nm) A1-DUT
  • Polariseur DIC Escamotable, Cube analyseur DIC, DIC prism 20X et 40X
  • Condenseur motorisé
  • Logiciel Nis Element (64 bits, 3.22.11, Hasp ID 193DD0C6
  • contact : Aurélia Rolland

 

Date de modification : 25 janvier 2024 | Date de création : 27 février 2020 | Rédaction : Camille Rivard