Réseau des Microscopistes INRAE

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Microscope épifluorescence

Consulter l'ensemble des résultats Microscope épifluorescence :

AxioImager M2 de chez Zeiss Microscopy, localisé sur le Plateau d'Imagerie Cellulaire PIC (Tours), microscope droit équipe d'une platine motorisée en XY et couplé au logiciel ZEN Blue 3.9
Objectifs 1.25X/0.075 air, 2.5X/0.03 air, 10X/0.3 air, 20X/0.5 air, 40X/0.75 air
Source X-Cite 120PC métal-halide
Filtres DAPI, FITC, Cy3, Cy5
Caméra Axiocam 305 couleur
Logiciel logiciel ZEN Blue 3.9
contact : Marie-Claire Blache

AXIO IMAGER Z2 de chez Zeiss Microscopy, localisé sur le plateau technique IMAC de la SFR QUASAV (Angers), microscope droit, entièrement motorisé à l'exception de la platine xy (manuelle, à commande droite)
Oculaires PL 10X/25 Br. foc
Objectifs EC PLAN -NEOFLUAR 10X/0,3 M27 ∞/+- (Zeiss 420340-69901), EC PLAN -NEOFLUAR 20X/0,5 M27 ∞/0,17 (Zeiss 420350-9900), EC PLAN -NEOFLUAR 40X/1,30 OIL DIC M27 ∞/0,17 (Zeiss 420462-9900), PLAN APOCHROMAT 100X/1,40 OIL DIC M27 ∞/0,17 (Zeiss 420792-9900)
Sources HXP 120V fibrée Metal halide (lampe à mercure à réflecteur arc court, 120W, 2000H), système d'éclairage COLIBRI.2 (LED 402 nm, 470 nm, 505 nm, 555 nm)
Filtres tourelle motorisée de 10 filtres : 49 DAPI (ex 365, em 445/50), 47 HE CFP (ex 436/25 em 480/40), 46 HE YFP (ex 500/25 em 525/30), 78 HE C/Y (ex 445/25 510/15, em 480/22 LP530), 38 HE GFP (ex 470/40 em 525/50), 09 A488 (GFP LP) (ex 470/40 em LP515), 20 Red FP (ex 546/12 em 593/40), 63 HE RFP (ex 572/25 em 629/62), 79 HE GFP/DsRED (ex 470/27 566/25 em 512/30 630/98), 50 CY5 (ex 640/30 em 690/50)
Détecteurs Scientific CMOS Sensor (2048 x 2048 pixels, pixels de 6.5 µmx 6.5 µm², dynamic 37 000 : 1, QE 82%) et Sony IMX 264 Exmor Pregius, CMOS (5 méga pixels, 2464 (H) x 2056 (V) pixels², pixels de 3,45 x 3,45 µm²)
Caméras monochrome ORCA-Flash4.0 Model C11440-22CU (16 bits, frame rate : 100 fps full resolution, Num) et ZEISS AxioCam 305 couleur. (8 et 12 bits/pixels, 36 images/seconde
Logiciel ZEN blue 2.3 pro avec les modules Z-stack, time lapse, 3D visualization, extended focus et déconvolution
contact : Aurélia Rolland

Axiovert 200M de chez Zeiss Microscopy, localisé sur la plateforme PHIV-MRI de la Gaillarde (Montpellier), Microscope inversé dédié à l'imagerie des senseurs ratiométriques
Objectifs 5X EC Plan-Neofluar0, 16NA, 20X A Plan Apochromat 0.3 NA
Sources LED lumencor spectra 7, LED HUB omicron
Filtres plusieurs combinaisons possibles entre la roue interne du microscope et roue externe sutter
Caméras CoolSnap HQ
contact : Carine Alcon

AXIO ZOOM V16 de chez Zeiss Microscopy, localisé sur le plateau technique IMAC de la SFR QUASAV (Angers), microscope droit, entièrement motorisé à l'exception de la tourelle à objectif, encodée, à rotation manuelle, de l'illumination de la base et de l'éclairage annulaire
Oculaires Q9 et PL 16X/16 Br. foc
Objectifs PLAN -NEO FLUAR 1X Z / 0,25 FWD 56 mm et EC PLAN -NEO FLUAR 2.3X Z / 0,57 FWD 10.6 mm
Sources LED X-Cite XYLIS XT720S (365 nm), éclairage diascopique pour lumière transmise de type LED (900lm, 6500K, 50 000H) sur embase (BF, oblique, DF), éEclairages épiscopiques pour lumière réfléchie : col de cygne, doubles fibres (CL 9000 LED, 900lm, 6500K, 50 000H, 80W max) et éclairage annulaire segmentable (easyLED, 48 LED, 4 modes d'illumination, demi ou quart de cercle, 12V)
Filtres DAPI 49 (ex 365nm, em 445/50), FITC/GFP/488/Cy2 (38HE) (ex 470/40 em 525/50), Filtre FITC Chlorophyle LP (09) (ex 485/20 em LP515), Filtre HE Cy3 (43) (ex 550/25 em 605/70)
Détecteurs Scientific CMOS Sensor FL-400 (2048 x 2048 pixels, pixels de 6.5 x 6.5 µm², dynamique 33 000 : 1, QE 70% à 600 nm) et CMOS Sony IMX 264 Exmor Pregius (3 Mégapixels, 2464 (H) x 2056 (V) pixels, pixels de 3,45 x 3,45 µm²)
Caméras monochrome ORCA-Flash4.0 LT V3 Model C11440-42U30 (4 Mpixels, 16 bits, frame rate : 30 fps full resolution) et ZEISS AxioCam 305 couleur (8 et 12 bits/pixels, 36 images/second, (ref 426560-9030-000)
Apotome 2 : module d'imagerie structurée
Centre de commande déporté (Ecran tactile couleur de piloage) SYCOP 3, commande co-axiale mobile xy, variateur d'intensité, déporté pour la source de fluorescence X-cite
Logiciel ZEN blue 2.6 pro avec les modules multi-channels, déconvolution, Z-stack, time lapse, focus étendu, autofocus, mosaïque d'image et multi-position
contact : Aurélia Rolland

BH2 de chez Olympus, localisé sur le plateau technique IMAC de la SFR QUASAV (Angers), microscope droit
Objectifs SP 4 / 0,1 160/- : Semi Plan Apo X4 (CETI, NA 0,16 WD 9,83 mm FD 36,71 mm), SP APO 10 / 0,40 160/0,17 : Semi Plan Apo (OLYMPUS, NA 0,40 WD 2,03 mm FD 18,34 mm), Splan 20 NH 0,46 160/0,17 (OLYMPUS, NH : contraste négatif fort, PCSPL 20X NH, NA 0,46 WD 1,5 FD 8,03 Super grand champ à ressort), NEA 40 X / 0,65 160/0,17 (OLYMPUS), UVFL 100PL 1,30 sil 160/0,17 (Olympus, Fluorescence y compris à excitation UV, immersion silicone, PL : contraste de phase positif faible)
Sources éclairage pour lumière réfléchie : lampe à vapeur de mercure 100 W haute pression - Source HBO 100W/2 USH - 102D
Filtres 20 UG1 - 17L420 (exc 330-385, miroir dichroïque 400 nm, barrier filter 420 nm), B (exc 410-490, miroir dichroïque 500 nm, barrier filter 515 nm), 41017 EN GFP C10918 (exc 450-490 nm, miroir dichroïque 495nm, barrier filter 525/50 500-550 nm)
Détecteur CDD couleur 2/3" (5 millions de pixels, pixel de 3,4 x 3,4 µm²)
Caméra camera couleurs, MicroPublisher 5.0 RTV, Q Imaging RoHS (CCD digital camera, color, 30 bits with Peltier cooling)
contact : Fabienne Simonneau

BX60 de chez Olympus, localisé au Pôle de microscopie µ³A (Avignon), microscope droit
Objectifs 10X, 20X, 40X et 100X
Source lampe à vapeur de mercure
Filtres GFP, DAPI, Mcherry
Caméra Jenoptik
contact : Isabelle Bornard

BX6 1 de chez Olympus, localisé sur la plateforme PHIV-MRI de la Gaillarde (Montpellier), microscope droit
Objectifs 4x Plan Fluorite 0,13 NA, 10X Plan Fluorite 0.3 NA, 20X HC Plan Fluorite 0.5 NA, 40X Plan Fluorite 0.75 NA, 63 Plan Apochromat 1.25 NA oil, 100X Plan Apochromat 1.35 NA oil
Source Xcite 120PC
Filtres Filtre 1 (Em 470 +/- 20 BS 495 ex BP 500-530), Filtre 2 (Ex 360-370 BS 400 nm Em LP 420), Filtre 3 (Ex 400-410 BS 455 Em LP 455), Filtre 4 (Ex 510 – 550 BS 570 Em LP 590), Filtre 5 (Ex 460 – 500 BS 505 Em BP 510-560), Filtre 6 (Ex 515 – 555 BS 565 et BP 575 – 645)
Caméras Hamammastu OrcaAG, Camera couleur Jenoptik C5
contact : Carine Alcon

DM4500 de chez Leica, localisé sur la plateforme PHIV-Lavalette (Montpellier), microscope droit
Objectifs 1,25x, 5x, 10x, 20x, 40x, 100x
Source Xcite 120 LED
Filtres DAPI, FITC, TX
Caméras Couleur Retiga 2000R
contact : M atthieu Dejean

DM5500B de chez Leica, localisé sur le plateau technique de cytologie-microscopie de BIOGER (Thivernal-Grignon), microscope droit, équipé pour faire du contraste interférentiel (CID - DIC)
Objectifs X10/0,30 dry, X20/0,50 dry, X40/PH/0,75 dry, X63/PH/1,25 oil, X100/1,4-0,7 oil
Source illuminateur EL6000 Lampe HXP
Filtres DAPI (Leica-A), FITC (Leica I3), YFP, TX2, RFP
Détecteur CCD
Caméra Leica DFC 450C
contact : Kaori Sakai

Dialux 20 de chez Leitz, localisé sur le plateau technique de cytologie-microscopie de BIOGER (Thivernal-Grignon), dans un laboratoire L2, microscope droit
Objectifs X10/0,25 EF, x25/0,25, x40/0,65 PL Fluotar, X100/1,25 HI
Source lampe HBO
Filtres filtres A, FITC
contact : Kaori Sakai

DM6B de chez LEICA, localisé sur le plateau technique Histologie et imagerie du LPGP (Rennes), microscope droit
Objectifs x 4 hc plan fluotar 0,13, x 10 hcx fluotar 0,32, x 20 plan apo 0,8, x40 hc plan Apo 0,95
Source LED3
Filtres DAPI, FITC, TEXAS RED, CYA 5
Caméra k5 scmos et k3C
contact : Adèle Branthonne

ECLIPSE 80i de chez Nikon, localisé sur la cellule APEX (Nantes), microscope droit
Objectifs 10X, 20X, 40X
Source lampe à mercure
Caméra DS-QiM1C
contact : Laurence Dubreil

ECLIPSE 80i de chez NIKON, localisé à l'atelier Infectiologie et imagerie de l'ISP (Nouzilly), dans un laboratoire L2, microscope droit
Objectifs x 2 (Plan Apo 2x/0.1), x 4 (Plan Apo 4x/0.2), x 10 (Plan Fluo 10x/0.30), x 20 (Plan Apo 20x/0.75), x 20 (Plan Fluo 20x/0.50), x 40 (Plan Fluo 40x/0.75), x 40 (Plan Apo 40x/0.95), x 60 (Plan Apo 60x/1.40 oil)
Source lampe à vapeur de mercure
Filtres Ex 340-380 Em 435-485, Ex 465-495 Em 515-555, Ex 450-490 Em >520, Ex 510-560 Em >590, Ex 542-582 Em 604-679
Caméra digitale DXM 1200C, Nikon
contact : Christelle Rossignol

Eclipse de chez Nikon, localisé sur la plateforme PHIV-Lavalette (Montpellier), microscope droit
Objectifs 2x 4x 10x 20x 40x 60x 100x
Source Sola SE UV365
Filtres Dapi, GFP, Alexa 546, TX
Caméra DS Ri2 couleur
Acquisition automatisée sur 4 lames
contact : M atthieu Dejean

IX81 de chez Olympus, localisé à Symagerie (Villeurbanne), microscope inversé
Objectifs 2X, 10XPH, 40XPH, 50X, 60X, 100X
Source lampe à vapeur de mercure
Filtres DAPI, FITC, TRITC, Cy5
Caméras couleur, noir et blanc
contact : Severine Balmand

DMi8 avec module Thunder Imager de chez Leica, localisé à Symagerie (Villeurbanne), microscope inversé équipé d'une platine de scan XY
Objectifs 2X, 20XPH, 40XPH, 63X, 100XPH
Source LED
Filtres DAPI, FITC, TRITC, Cy5
Caméras couleur, noir et blanc
contact : Severine Balmand

Observer 7 de chez Zeiss Microscopy, localisé sur la plateforme PHIV-MRI de la Gaillarde (Montpellier), microscope inversé équipé d'un système apotome
Objectifs 5X EC Plan-Neofluar0,16NA, 10x EC Plan-Neofluar 0,3NA, 20X Plan-Apochromat 0,8NA, 40x Plan-Apochromat DIC 1,3 NA oil, 63X Plan-Apochromat DIC 1.4 NA oil
Source Xcite 120 LED
Filtres DAPI, CFP, GFP, DsRed, cy5
Caméra Hammamastu Orca Flash 4
contact : Carine Alcon

Olympus, localisé sur la cellule APEX (Nantes), microscope droit, associé au logiciel Inform
Objectifs 5X, 10X, 20X
Source lampe à mercure
Caméra Mantra
Sources LED 3 couleurs COO
contact : Laurence Dubreil

Statif modèle IX73P1F de chez Olympus, localisé à l'atelier d'histologie de l'UNH (Theix), microscope inversé
Objectifs 10x 20x 40x
Sources LED 3 couleurs COOLLED PE300
Filtres FITC, CY3, Cy5, Dapi
Camera CAM HAMAMATSU FLASH 4.0 LT
contact : Cécile Coudy-Gandihon

Z2 Imager "Apotome" de chez Zeiss Microscopy, localisé à l'Observatoire du Végétal OV-Cytologie/Imagerie (Versailles-Grignon), microscope droit équipé d'un système apotome N°423666-01 lumière structurée
bjectifs EC Plan-Neofluoar 10x sec, NA 0.3, Plan APOCHROMAT x25 multi-immersion, NA 0.8, Plan APOCHROMAT x40 huile, NA 1.3, Plan APOCHROMAT x63 huile, NA 1.4, Plan APOCHROMAT x100 huile, NA 1.4
Source HXP 120 C
Filtres DAPI-49 BP (Exc 365 Dichroique 395 Emi 445/50), GFP Sp Green (AHF 36-720 Exc 494/20 Dichroique 506 Emi 527/20), Cy3 Sp Red (AHF 36-750 Exc 586/20 Dichroique 605 Emi 628/32), Cy5 Sp Green (AHF 36-760 Exc 628/40 Dichroique 660 Emi 692/40), CFP-47 HE BP (Exc 436/25 Dichroique 455 Emi 480/40), YFP-47 HE BP (Exc 500/25 Dichroique 515 Emi 535/30)
Caméras MRm noir et blanc refroidie, bague 1x, résolution 1388*1040, pixels 1,4 M
Logiciel ZEN blue 2011 avec possibilité de réaliser des tiles (Images haute résolution de type mosaïque), des Z-stack (Pile d’image en Z) et des Mark and Find (multipostions)
contact : Aurélie Hurel

Z2 Imager "in situ" de chez Zeiss Microscopy, localisé à l'Observatoire du Végétal OV-Cytologie/Imagerie (Versailles-Grignon), microscope droit
Objectifs EC Plan-Neofluoar 10x sec, NA 0.45, Plan APOCHROMAT x25 multi-immersion, DIC, NA 0.8, Plan APOCHROMAT x40 huile, NA 1.3, DIC, Plan APOCHROMAT x63 huile, NA 1.4, DIC, Plan APOCHROMAT x100 huile, NA 1.4, DIC
Sources HXP 120 C
Filtres DAPI-49 BP (Exc 365 Dichroique 395 Emi 445/50), GFP Sp Green (AHF 36-720 Exc 494/20 Dichroique 506 Emi 527/20), Ds red Sp Orange (AHF 36-740 Exc 543/22 Dichroique 562 Emi 586/20), Cy3 Sp Red (AHF 36-750 Exc 586/20 Dichroique 605 Emi 628/32), Cy5 Sp Green (AHF 36-760 Exc 628/40 Dichroique 660 Emi 692/40), CFP-47 HE BP (Exc 436/25 Dichroique 455 Emi 480/40), YFP-47 HE BP (Exc 500/25 Dichroique 515 Emi 535/30)
Caméras HRc couleur CDD, bague 1x, résolution 4140*3096, pixels 13 M et MRm noir et blanc refroidie, bague 1x, résolution 4140*3096, pixels 14M
Logiciel ZEN blue 2011 avec possibilité de réaliser des tiles (Images haute résolution de type mosaïque), des Z-stack (Pile d’image en Z) et des Mark and Find (multipostions)
contact : Aurélie Hurel

Z2 Imager "meiose" de chez Zeiss Microscopy, localisé à l'Observatoire du Végétal OV-Cytologie/Imagerie (Versailles-Grignon), microscope droit
Objectifs EC Plan-Neofluoar 10x sec, NA 0.3, Plan APOCHROMAT x25 multi-immersion, NA 0.8, Plan APOCHROMAT x40 huile, NA 1.3, Plan APOCHROMAT x100 huile, NA 1.4
Sources HXP 120 C
Filtres DAPI-49 BP (Exc 365 Dichroique 395 Emi 445/50), GFP Sp Green (AHF 36-720 Exc 494/20 Dichroique 506 Emi 527/20), Ds red Sp Orange (AHF 36-740 Exc 543/22 Dichroique 562 Emi 586/20), Cy3 Sp Red (AHF 36-750 Exc 586/20 Dichroique 605 Emi 628/32), Cy5 Sp Green (AHF 36-760 Exc 628/40 Dichroique 660 Emi 692/40), CFP-47 HE BP (Exc 436/25 Dichroique 455 Emi 480/40), YFP-47 HE BP (Exc 500/25 Dichroique 515 Emi 535/30)
Caméras MRm noir et blanc refroidie, bague 1x, résolution 1388*1040, pixels 1,4 M
Logiciel ZEN blue 2011 avec possibilité de réaliser des tiles (Images haute résolution de type mosaïque), des Z-stack (Pile d’image en Z) et des Mark and Find (multipostions)
contact : Aurélie Hurel

90i de chez Nikon, localisé sur le plateau technique Histologie et imagerie du LPGP (Rennes), microscope droit
Objectifs x 10 plan, x 20 plan Apo ON 0.75 DIC, x 40 plan fluo ON 0.75, x60 plan Apo ON 1.4 DIC à huile
Source Lampe C-LHGFI HG à réflecteur de mercure
Filtres DAPI, FITC, TRITC, TEXAS RED
Caméra Nikon type DS Ri1 refroidie
contact : Adèle Branthonne

Date de modification : 25 janvier 2024 | Date de création : 27 février 2020 | Rédaction : Camile Rivard